干细胞ECM修复软骨缺损与鹿茸干细胞ECM的研究进展

03 8月 2023
Author :  

王玉俗1,褚文辉2,李久波3,赵全民1N,李春义4※

(1.吉林农业大学中药材学院,吉林长春130118;2.台州学院生命科学学院,浙江台州317000;3.长春市农业机械研究院, 吉林长春130000;4.中国农业科学院特产研究所特种经济动物分子生物学国家重点实验室,吉林长春130112)

收稿日期:2019—10—19

基金项目:中国科学院A类战略性先导专项(XDAl6030305)

作者简介:王玉俗(1994一),男,贵州省遵义市人,在读硕士研究生,从事特种经济动物干细胞及相关研究。

※通讯作者:李春义,男,教授,博士生导师,从事鹿茸生物学研究:赵全民,男,副教授,硕士生导师,从事经济动物疫病研究。

摘要:鹿茸软骨中富含血管,不但能修复缺陷还能实现再生,是研究软骨缺损修复的良好天然模型。由于鹿茸干细胞所分化的软骨分布着丰富的血管网络,所以其ECM中可能含有大量促进软骨生成的细胞因子和功能蛋白。本文就软骨缺陷修复进行综述,对使用鹿茸干细胞ECM修复软骨缺陷的初步结果进行总结,并提出展望。

关键词:软骨修复;ECM;干细胞;鹿茸  中图分类号:Q786   文献标识码:A   文章编号:1001-4721(2020)01.0064.05

Research Progress of Stem Cell Extracellular Matrix in Repairing Carti--lage Defects and Antler Stem Cell Extracellular Matrix

WANG Yu·SUl,CHU Wen-hui2,LI Jiu·b03,ZHAO Quan-minl※,LI Chun-yi4※

(1.College of Traditional Chinese Medicine,Jilin Agricultural University,Changchun 130118,China;2.Academy of Life Sciences,Taizhou University,Taizhou 317000China;3.Changchun Agricultural Machinery Research Institute,Changchun 130000,China;4.StateKey Laboratory for Molecular Biology of Special Economic Animals,Institute of Special Wild Economic Animals and Plants,Chinese Academy of Agricultural Sciences,Changchun 130112,China)

Abstract:Antler cartilage is rich in blood vessels,which can not only promote defect repair, but also regenerate itself, thus antler is a good animal model to use for the study of cartilage defect repair.Because the cartilage differentiated from antler stem cells is rich in vascular net—works,its extracellular matrix(ECM)contains a 1arge number of cytokines and functional proteins that can promote cartilage for mation.In this paper, the currentstatus of repairing cartilage defects was reviewed,and the preliminary results of using antler stem cell ECM to repair cartilage defects were summarized,and the prospects were put forward.

Key words:cartilage repair.ECM:stem cell:antler

      透明软骨是软骨的主要类型之一,由软骨细胞及细胞外基质(Extracellular matrix,ECM)所构成[1】。关节表面软骨层软骨细胞的主要营养来源是关节液,由于内无血管,只能靠细胞基质渗透完成,再加上软骨细胞缺乏迁移能力,不能聚集到创伤部位,因此,关节表面软骨损伤后自身修复能力受到极大的限制。在关节滑膜有病变时,如机械损伤导致的骨关节炎,关节软骨出现破损;类风湿性关节炎,滑液分泌异常失去正常的润滑作用,摩擦力增大导致软骨缺损[2]。长期的软骨缺损使破损面逐步加大,最终的治疗方式为人工关节置换。研究表明,美国每年因关节炎接受关节置换手术的患者已经超过140万。我国估计每年接受关节置换的患者约为45万【3_4]。因此,旨在减少骨性关节炎发生,大量的软骨修复研究意义重大。

      随着人工合成材料和纳米材料的兴起,种子细胞结合支架材料为软骨缺损修复开辟了新时代[5-6]。研究表明,猪软骨细胞的细胞外基质和聚羟基乙酸(Pol—yglycolic acids,PGA)支架植入裸鼠皮下可构建软骨组织。试验表明,软骨细胞在ECM中的增殖,黏多糖(Glycosaminoglycan,GAG)和胶原的沉积明显高于PGA,且均匀地分布在ECM支架中,PGA支架主要在支架外周区域有沉积[7]。表明ECM为软骨形成提供了有利环境。天然支架ECM具有高组织相容性并且具有保留细胞因子、生长因子和其他功能性蛋白质的潜力。

      鹿茸组织是一种骨/软骨复合物,其软骨组织中富含血管、多种骨/软骨生成相关因子[8]’是一种良好的软骨修复材料。但鹿茸价格昂贵,使用鹿茸组织ECM修复软骨缺损不是最佳的选择。李春义等[9】研究表明,鹿茸的发生是由鹿茸干细胞分裂、分化而实现,即生茸区骨膜(Anterogenic periosteum,AP)分化为角柄,再由角柄骨膜(Pedicle periosteum,PP)再生出鹿茸。鹿茸干细胞具有分化出完整的骨、软骨组织器官的能力,将鹿茸干细胞进行体外培养,收集其分泌的ECM,从理论上,ECM可能是软骨修复的一个新的天然生物支架材料。本文就软骨缺陷修复进行综述,并对使用鹿茸干细胞ECM修复软骨缺陷的初步结果进行总结。

1. 软骨的结构特征

      软骨主要作用包括承受力学负荷,关节软骨能将作用力均匀分布,使承重面扩大,保护关节不易损伤;润滑作用,关节软骨表面光滑,因此关节运动时不易磨损[101两个方面。软骨是由软骨细胞和ECM组成,其中,ECM约占总体积的98%,其主要由水、蛋白多糖和胶原组成。胶原的主要成分为II型胶原,在软骨内形成网架结构维持形态和硬度[11]。胶原网架结构内由蛋白多糖填充,蛋白多糖中大量带负电的阴离子如COO一和$032一相互排斥并吸引阳离子,从而产生渗透压,使水进入软骨内[121。硫酸软骨素等吸附流动的水产生摩擦阻力,软骨承受压力后引起水在多孔固态基质内流动,使水起到承重的作用。软骨细胞是一种高度分化的细胞,存在于软骨陷窝,约占总体积的1%[131。软骨中软骨基质蛋白的合成和分泌主要来源于软骨细胞。成年人的软骨细胞在正常状态下不会发生分裂,但当软骨在受到病理刺激后会发生增殖。胶原纤维与基质共同作用使软骨具有弹性和张力及强度。胶原纤维类似混凝土中的钢筋,其他基质类似混凝土中的水泥。由于软骨具有这种富含基质的组织学特征,软骨基质受到破坏就意味着软骨的缺损。

2. 间充质干细胞修复软骨缺损

      间充质干细胞(Mesenchymal stem cells,MSCs)是组织工程方法中常用的细胞。这些细胞具有较高的增殖率和软骨分化能力,容易从脂肪组织、骨髓和滑膜中收集[14 -15]。据报道,植入的干细胞会释放生长因子、生物活性脂质和细胞因子,这些因子具有促进软骨再生和抗炎作用[16-18]。常用于治疗软骨缺损的干细胞有骨髓问充质干细胞(BMSCs)和脂肪干细胞(ADSCs)等。

2.1 骨髓间充质干细胞修复软骨缺损

     骨髓问充质干细胞(Bone mesenchymal stem cel.1s,BMSCs)是组织工程中研究最多的干细胞,不同的研究均报道了这些细胞治疗软骨缺损的潜力,并已经在临床l期和II期中得到应用[19]。Wakitani等[20]在40名膝关节缺损患者中使用BMSCs修复,并对患者进行11年的随访和观察,临床治疗效果表明,关节缺损得到修复并且在观察期间未出现肿瘤或发生感染。证明BMSCs移植是安全有效的治疗方法。Gobbi等[21] 对37例关节软骨缺损患者进行治疗,其中19例使用自体软骨移植治疗,18例使用自体BMSCs治疗。结果表明,5年后自体软骨移植和BMSCs的治疗成功率分别为76%和81%,再生软骨都为透明软骨。

2.2 脂肪干细胞修复软骨缺损

      脂肪干细胞(Adipose—derived stem cells,ADSCs)由于其易获取,并具有与BMSCs相同的特性,被认为是修复软骨缺损中BMSCs的良好替代品[22]。研究表明,ADSCs可产生多种有益的旁分泌因子降低关节软骨中肿瘤坏死因子(TNF.d)和基质金属蛋白酶(MMP)的产生,增强软骨保护作用[23_24]。Yong.Gon等[25]对18名关节缺损患者关节内注射ADSCs,2年后随访发现患者软骨缺损得到改善、疼痛感减轻和膝关节功能得到改善。

3. ECM修复软骨缺损

      ECM是活体组织和器官内细胞分泌的细胞外产物,其作为细胞生长的微环境,在细胞黏附、增殖和分化方面都起着重要作用。ECM主要由胶原蛋白、蛋白聚糖与氨基酸聚糖等多种大分子组成的复杂网络结构[26_271。ECM在不同的组织器官中主要成分含量不同。如胶原蛋白种类众多,其中Ⅱ型胶原蛋白主要由软骨细胞产生的,多存在于骨骼、关节、肌腱等组织中,II型胶原比I、III型胶原含有更丰富的羟脯氨酸,更适合对软骨修复。Wang等[2Sl:lg从兔和大鼠肌腱和尾部获得的II型和I型胶原混合制成支架,并将兔软骨细胞与兔胶原支架和大鼠胶原支架混合植入经手术创建的缺损兔膝关节软骨中,结果表明,修复的软骨细胞均明显地成簇排列,修复软骨与邻近的健康组织整合良好。ECM具有支持组织形态形成,并且为免疫应答提供场所的功能,其在机体生长发育过程中起到重要作用。ECM支架具有高组织相容性并且具有保留细胞因子(Cytokine,CK)、生长因子和其他功能性蛋白质的潜力。Schwarz等[29] j各软骨组织脱细胞得到ECM支架后对软骨缺损处进行修复,结果显示,ECM支架在促进新生软骨基质合成方面具有明显优势。猪小肠黏膜下层(Porcine small intestinal submucosa,SIS).ECM已被用于重建各种组织,并且取得了良好的临床效果[30]。但目前的组织ECM制备过程繁琐,不适合临床应用。

      在抗坏血酸的作用下,干细胞可分泌大量的胶原,形成细胞膜片即ECM。体外试验证明,软骨细胞通过细胞培养所得的ECM支架能够促进细胞增殖,并且可以促进组织再生[31]。细胞ECM支架形成的过程通常分三步:第一步,单层培养细胞至80%~90%;第二步,添加抗坏血酸促进ECM沉积;第三步,收集ECM,去细胞化,得到ECM支架。ECM支架材料,不但能作为生物支架为细胞的进入提供支撑,而且还保留了原组织中生长因子,移植到活体后组织会做出自然应答。在生物支架材料软骨修复过程中,一些重要的生长因子,如转化生长因子(Transforming growth factoL TGF)、成纤维细胞生长因子(Fibroblast growth factoL FGF)和表皮生长因子(Epidermal growth factor,EGF) 如能保留,可以增强软骨细胞的功能并促进软骨细胞再生[26]。Tang等[32]使用BMSCs—ECM对兔膝关节软骨缺损进行治疗,结果表明,ECM可以使BMSCs促进缺损部位细胞增殖,在软骨分化和基质生成中发挥重要作用。因此,干细胞ECM支架制备不仅简单,而且可以更好地使细胞附着,有可能成为临床上具有广阔前景的软骨修复材料。

4. 茸干细胞ECM的初步研究和应用前景

4.1 鹿茸的再生与鹿茸干细胞

      鹿茸作为唯一能够完全再生的哺乳动物附属器官,可以作为众多再生研究的理想模型,同时也为我们揭示自然界哺乳动物复杂器官完全再生的问题提供一个理想的生物模型[33-34]。鹿茸不是直接从鹿头上长出来的,而是由鹿头部的角柄生长出来的附属器官,角柄也不是与生俱来的,是鹿将要进入青春期时才开始萌发,生长到一定高度(梅花鹿、赤鹿为5~6 cm)时,角柄顶端开始出现稀疏的毛发,并具有光泽,预示着初角茸已经开始发生[34]。然后鹿茸出现快速生长并逐渐成熟,再生的鹿茸生长非常快:梅花鹿的速度能达12.5 rnrn/d,马鹿的可达27.5 mm/d;秋天到来时,鹿茸逐渐骨化,茸皮脱落,变成骨化的鹿角[35-36]。

      组织学研究发现,在鹿角脱落前期,角柄远端部分变得粗糙,且血管化明显,可以将死去的鹿角和活组织角柄区分开来。鹿角一旦脱落,角柄残桩远端的皮肤随即生长并向内迁移,逐渐覆盖角柄断面。随即PP组织也开始增厚,PP细胞分裂繁殖形成2个新月形的生长中心。一个在前部,形成鹿茸的眉枝,另一个在后部形成鹿茸的主干。其内部是新生的含有血管的软骨组织,软骨组织上覆盖着一层增生的间质细胞[37]。

      研究表明,PP是驱动鹿茸再生的组织基础;青春期公鹿的额外脊AP组织是角柄和初角茸生成的组织基础。AP组织的发现揭示了鹿茸发生的秘密。于是设计试验将AP移植到鹿身体的其他部位,如前额可以在移植处形成完整的异位鹿茸,并且拥有和正常鹿茸一样周期性再生的能力。所以AP组织是角柄和初角茸发生的关键组织[38]。

      基于AP和PP的独特性,Li等[39]对这2种细胞做了进一步研究,发现这2种细胞都表达了胚胎干细胞标记物Oct4、Sox2、Nanog、CD9。离体条件下可以诱导分化成软骨细胞、成骨细胞和神经元细胞。确定AP与PP细胞都是鹿茸干细胞,AP细胞(APC)是鹿茸发生的干细胞,PP细胞(PPC)是鹿茸再生的干细胞。

4.2 鹿茸干细胞ECM在修复软骨缺损中的初步研究

      我们用大鼠进行关节软骨缺损修复试验研究,将大鼠膝关节造成直径2 mm、深2 mm的软骨缺损,然后随机分为实验和对照2个组,对照组大鼠不进行任何治疗,实验组将APC—ECM填充到软骨缺损处。12周后分别取样做组织染色观察,所得结果如图1所示,12周时对照组没有出现软骨修复的迹象,缺损处明显,软骨下骨由纤维组织填充修复;实验组APC—ECM中有软骨细胞产生,缺损部分修复的软骨和边缘的正常软骨结合良好,修复的软骨厚度与正常软骨厚度一样,表面光滑平整,软骨下骨修复与正常软骨相似。

4.3 鹿茸干细胞ECM应用前景

      鹿茸中富含各种促进骨/软骨生长的细胞因子和功能蛋白。胰岛素样生长因子(Insulin.1ike growth fac.tor,IGF)是一类鹿茸软骨生长调控因子。鹿茸顶端非骨化区富含IGF受体,并且从上至下mRNA的表达量逐渐减少[40】。TGF在鹿茸骨膜细胞向成骨细胞转化、细胞外基质合成以及形成新骨等方面具有明显的促进作用[41-42]。在各种细胞因子和功能蛋白的作用下,鹿茸干细胞分裂,分化生成完整的鹿茸组织。使用鹿茸干细胞作为种子细胞培养分泌的ECM其中保留大量的促进软骨生长的细胞因子,为软骨修复提供了一个新的可能性。

5. 展望

      使用干细胞修复软骨缺损的想法早有提出并己实施,但将鹿茸干细胞用于修复软骨缺损的研究鲜有报道。经过我们的研究已经初步证明鹿茸干细胞ECM修复软骨缺损的效果良好。鹿茸干细胞有衍生出完整鹿茸的能力,其可以分泌大量的促进软骨生长的细胞因子和功能蛋白。通过培养诱导鹿茸干细胞分泌ECM保留其中促软骨生长的细胞因子和功能蛋白,并且有效避免病原体传播、炎症等免疫反应的风险,将为软骨修复提供参考。

参考文献

[1] 修忠标.关节软骨修复与细胞因子相关性研究进展[J].医学综述,2009,1 5(20):3045-3047.

[2] 章亚东.软骨损伤修复技术的既往与未来[n中国骨与关节杂志,2018,(8):561-563.

[3] Katagiri H。Mendes LF,Luyten FEDefinition of a critical size osteochondrai knee defect and its negative effect on the surro.unding articular cartilage in the rat[J].Osteoarthritis&carti—lage,2017,25(9):153 1-1540.

[4] Stig H,Nerhus TK,Rotterud JH,et a1.Focal cartilage defects in the knee impak quality oflife as much as severe osteoarthritis:A comparison of knee injury and osteoarthritis outcome score in 4 patient categories scheduled for knee surgery[J].American journal ofsports medicine,2010,38(2):23 1-237.

[5] Robert H,Bahuaud J,Kerdiles N,et a1.Treatment of deep carti—lage defects in the knee with autologous chondrocyte trans—plantation:A review of28 cases[J].Revue De Chirurgie 0r山。一pedique Et Reparatrice De Lappareil Moteur,2007,93(7):701-709.

[6] Magnussen RA,Dunn WR,Carey几,et a1.Treatment of focal articular cartilage defects in the knee:A systematic review[J].Clin Orthop Relat Res。2008.466(4):952—962.

[7] Jin CZ,Choi BH,Park SR,et a1.Cartilage engineering using cell derived extracellular matrix scaffold in vitro[J].Journal of biomedical materials research part A,2010,92A(4):1567—1577.

[8] 付晶,褚文辉孙红梅,等.血管化鹿茸软骨组织与骨组织修复[J] .中国组织工程研究,2016,20(46):6970—6977.

[9] Li Chunyi,Yang Fuhe,Sheppard Allan.Adult stem cells and mammalian epimorphic regeneration—insights from studying annual renewal of deer antlers[J】.Curt Stem Cell Res Ther’ 2009.4(3):237—25 1.

[10] 张春秋,李可,高丽兰,等.软骨组织工程构建中的生物力学[J].力学进展,2018,48(1):414-441.

[11] 李杰,王少伟,魏垒,等.A.2巨球蛋白对急性关节损伤治疗作用的研究进展[J].实用骨科杂志,2012,18(3):236.240.

[12] 宋宇锋,卫小春,李之润.去势大鼠关节软骨病理变化的研究[J]昆明医科大学学报,2011,32(12):48—51.

[13] 赵瑞鹏.体外间接共培养兔膝关节软骨单位对软骨细胞生物学特性的影响[D】.太原:山西医科大学,2017.

[14] Bari C D,Dellaccio F'Tylzanowski P,et a1.Multipotent mesenchymal stem cells from adult human synovial membrane[J].Arthritis&rheumatology,2001,44(8):1928—1942.

[15] Mackay A M,Beck S C,Murphy J M,et a1.Chondrogenic differentiation of cultured human mesenchymal stem ceHs from marrow[J].Tissue engineering,1998,4(4):415-428.

[16] Aurefio V,Miguel Angel M F,Francisco D C,et a1.Treatment of knee osteoarthritis wim allogeneic bone marrow mesenchymal stem cells:A randomized controlled trial【J】.Transplantation,2015,99(8):1681.1690.

[17] Koh Y G,Jo S B,Kwon O R,et a1.Mesenchymal stem cell injections improve symptoms of knee osteoarthritis[J].Arthroscopy—the journal of arthroscopic&Related surgery,2013,29(4):748.755.

[18] Koh Y G,Choi Y J.Infrapatellar fat pad-derived mesenchymal stem cell therapy for knee osteoarthritis[J].Knee,2012,19(6):902.907.

[19] Phull A R,Eo S H,Abbas Q,et a1.Applications ofchondrocytebased cartilage engineering:An overview[J].Biomed research international,2016,(2):1.17.

[20] Wakitani S,Okabe T,Horibe S,et a1.Safety ofautologous bone marrow-derived mesenchymal stem cell transplantation for cartilage repairin41 patientswith45jointsfollowedforupto 11 years and 5 months[J].Tissue Eng Regen Med,2011,5(2):146.150.

[21] Gobbi A,Chaurasia S,Kamatzikos G,et a1.Matrix.induced autologous chondrocyte implantation versus multil:lotent stem cells for the treatment of large patellofemoral chondral lesions:A nonrandomized prospective trial[J].Cartilage,2015,6 (2):82.97.

[22] Nakanishi C,Nagaya N,Ohnishi S,et a1.Gene and Protein Expression Analysis of Mesenchymal Stem Cells Derived From Rat Adipose Tissue and Bone Marrow[J].Cffculmion Journal,201 1,75(9):2260-2268.

[23] Kuroda K,Kabata T,Hayashi K,et a1.The paracrine effect of adipose-derived stem cells inhibits osteoarthritis progression [J].BMC Musculoskeletal Disorders,2015,16(1):1-10.

[24] Paino F,La N M,Di N D,et a1.Human adipose stem cell differentiation is highly affected by cancer cells both in vitro and in vivo:implication for autologous fat grafting[J/OL].Cell Death and Disease,2017 Jan 19;8(1):e2568.[2019—12—20].doi:10.1038/cddis.2016.308.https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pub—med/28102844.

[25] Yong-Gon K,Seung—Bae J,Oh-Ryong K,et a1.Mesenchymal stem cell injections improve symptoms of knee osteoarthritis【J】.Arthroscopy-thejournal ofarthroscopic&related surgery, 2013,29(4):748.755.

[26] Traverse J H.Using biomaterials to improve the efficacy of cell therapy following acute myocardial infarction[J].Journal of cardiovascular translational research,2012,5(1):67—72.

[27] Badylak S EDofis T,Korkut U.Whole—organ tissue engineering:Decellularization and recellularization of three-—dimensional matrix scaffolds[J].Annual review of biomedical en—gineering,201 l,13(13):27—53.

[28] Wang KH,Wan R,Chiu LH,et a1.Effects ofcollagen matrix and bioreactor cultivation on cartilage regeneration of a full-thickness critical-size knee joint carthage defects with subchondral bone damage in a rabbit model[J/OL].PLoS One,2018 May 10;13(5):e0196779.[2019-12。20].doi:10.1371doumal.pone.0196779. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/29746554.

[29] Schwarz S,Koerber L,Elsaesser AF,et a1.Decellularized carti lage matrix as a novel biomatrix for cartilage tissue engineering applications[J].TissueengineeringpartA,2012,18(21/22):

2195.2209.

[30] Badylak S F The extracellular matrix as a biologic scaffold material[J].Biomaterials,2007,28(25):3587.3593.

[31] Liitzner J,Kasten P,Gfinther KP,et a1.Surgical options for patients with osteoarthritis of the knee[J].Nature reviews rheumatology,2009.5(6):309—3 1 6.

[32] Tang C,Jin CZ,Du XT,et a1.An autologous bone marrow mesenchymal stem cell-derived extracellular matrix scaffold applied with bone marrow stimulation for cartilage repair[J].Tissue Engineering Part A,20 1 4,20(1 7/1 8):2455-2462.

[33] Stocum DL.Regenerative biology and medicine[J].Materials today,2008,3(4):477—482.

[34] Fennessy PF.Deer antlers:Regeneration,function and evolution[J].Journal of the royal society of New Zealand,1984,14 (3):290—291.

[35] 杨言慧,焦晶雪,李军德,等.鹿茸:干细胞与环境相互的产物[J].中国现代中药,2017,19(1):3 1-36.

[36] 高志光,李春义,刘钟安,等.梅花鹿鹿茸生长速度、骨化程度与睾酮、雌二醇、碱性磷酸酶关系的研究[J]畜牧兽医学报,1988,19(3):171—176.

[37] 孙红梅,金美伶,路晓,等.鹿作为生物医学模型的研究进展[J].特产研究,2015,(2):52.56.

[381 Li C,Mackintosh C G,Martin S K,et a1.Identification of key tissue type for antler regeneration through pedicle periosteum deletion[J].Cell&tissue research,2007,328(1):65—75.

[39] Li C,Zhao H,“u Z,et a1.Deer antler--A novel model for studying organ regeneration in mammals[J].Int J Biochem Cell Biol,2014,56:111-122.

[40] 胡薇,孟星宇,田玉华,等.梅花鹿IGFl全长cDNA克隆及在鹿茸组织的表达[J] .东北林业大学学报,2011,39(11):71—75.

[41] 杨冠,杨晓.TGF—D超家族在软骨发生、发育和维持中的作用[J]-遗传,2008,30(8):953—959.

[42] 张璐,韩玉帅,郭斌,等.梅花鹿鹿茸间充质层与前成软骨层细胞的培养及SB-431542对其增殖的影响[J].中国农学通报,2011,27(11):35—38.

免责声明:本文包括图片转载于特产研究 2020年第1期,不代表本网站赞同其观点和对其真实性负责,我们主要用于阅读分享,非商业用途,如若侵权,请告知删除。

647 Views
伤口世界

电子邮件地址 该Email地址已收到反垃圾邮件插件保护。要显示它您需要在浏览器中启用JavaScript。